مطالعه مورفولوژی و مورفومتری گردن‌رحم درمیش‌های نژاد شال و افشاری

بختیاری راد, سروش; طوطیان, زهرا; صادقی نژاد, جواد; وجگانی, مهدی; شجاعی, بهادر

doi:10.22092/vj.2021.352372.1789

مطالعه مورفولوژی و مورفومتری گردن‌رحم درمیش‌های نژاد شال و افشاری

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

¹ گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران

² گروه مامایی و بیماریهای تولیدمثل، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران

³ گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید باهنرکرمان، کرمان، ایران

10.22092/vj.2021.352372.1789

چکیده

آگاهی از آناتومی گردن‌رحم به منظور افزایش کارآیی تلقیح مصنوعی از طریق گردن‌رحم بسیار مهم است. هدف این مطالعه شناسایی مورفولوژی و مورفومتری گردنرحم در گوسفندان نژاد شال و افشاری بود. 200 نمونه بر اساس شکل ظاهری، آرایش چین‌ها و درجه‌بندی گردن‌رحم بررسی گردید سپس قالب سیلیکونی تهیه و ارتفاع چین‌ها، فاصله دهانه خارجی گردن‌رحم تا اولین چین و فاصله بین چین‌ها اندازه‌گیری شد. در بررسی شکل دهانه خارجی گردن‌رحم بین دو نژاد، تفاوت معنی‌دار بود (001/0> P). در نژاد افشاری نوع پاپیلا با ۳۲٪ و در نژاد شال نوع منقاراردکی با ۳۸٪ ، بیشترین فراوانی در شکل دهانه خارجی گردن‌رحم را داشتند. فراوانی (درصد) درجه گردن‌رحم در نژاد افشاری به‌ترتیب درجه 1 (17%)، درجه 2 (47%) و درجه 3 (38%) و در نژاد شال نیز به‌ترتیب درجه 1 (21%)، درجه 2 (47%) و درجه 3 (32%) بود. هیچ‌کدام از متغیرهای فاز تخمدانی، گروه سنی (بره میش/بالغ)، نژاد و برهمکنش این فاکتورها با هم، تاثیر بر روی تعداد چین نداشتند. فاز تخمدانی بر روی قطر گردن رحم و فاصله دهانه تا اولین چین و اثر سن بر روی طول و قطر گردن رحم، ارتفاع چین ها، فاصله دهانه تا اولین چین و فاصله بین چین ها معنی دار بودند (05/0> P). نژاد نیز بر قطر گردن‌ رحم، فاصله دهانه تا اولین چین و فاصله بین چین ها موثر بود (05/0> P). با شناخت دقیق ساختار گردن‌رحم میش‌های نژاد شال و افشاری، شاید بتوان گامی موثر در اجرای تلقیح مصنوعی موفق از طریق گردن‌رحم برداشت.

کلیدواژه‌ها

20.1001.1.24235407.1401.35.1.18.7

عنوان مقاله [English]

Morphologic and morphometric study of the cervix of Shall and Afshari ewes

نویسندگان [English]

S. Bakhtiari Raad ¹
Z. Tootian ¹
J. Sadeghi Nezhad ¹
M. Vodjgani ²
B. Shojaei ³

¹ Department of Basic Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran

² Department of Theriogenology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran.

³ Department of Basic Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Bahonar University of Kerman, Kerman, Iran.

چکیده [English]

Knowledge of the anatomy of the cervix is crucial to increase the effectiveness of artificial insemination through the cervix. The aim was to identify the morphology and morphometry of the cervix in Shall and Afshari sheep. 200 samples were examined based on the appearance and then the type of arrangement of the folds and the grading of the cervix. Then, a silicone mold was prepared and the height, distance between the folds, the distance from the outer opening of the cervix to the first fold were measured. The type of cervical shape was significantly different between the two races (P <0.001) In Afshari breed papilla type with 32% and in shall breed duckbill with 38% had the highest frequency in the shape of the outer cervix. Frequency (percentage) of cervical degree in Afshari race is grade 1 (17%), 2 (47%) 3 (38%) and in shall breed is grade 1 (21%), 2 (47%) 3 (32%). None of the variables of ovarian phase, age group (lamb/adult), race and interaction of these factors had any effect on the number of folds. Cervical diameter and distance to the first crease and age in ovarian phase was effective on cervical length, diameter, crease height, cervical distance and also affected cervical diameter, cervical distance to the first crease and the distance between creases (P <0.05). By knowing the exact structure of the cervix of Shall and Afshari ewes, it may be possible to take an effective step in performing successful artificial insemination through the cervix.

کلیدواژه‌ها [English]

Artificial insemination
Anatomy
Cervix
Ewe

مراجع

1- Abbasi, M., S. Mohhamadzadeh and A. Gharezi. 2011. Morphometrical study of cervix in Lori sheep. Iran Veter. J, 7 (2), 36-43.
2- Abusineina, M. E. 1969. Effect of pregnancy on the dimensions and weight of the cervix uteri of sheep. Br Vet J, 125, 21–4.
3- Bunch, T. D. and H. S. Ellsworth. 1981. Gross anatomy of the ovine cervix. Int Goat Sheep Res 1, 282–285.
4- Dun, R. 1955. The cervix of the ewe. Its importance in artiﬁcial insemination of sheep. Aust Vet J 101–3.
5- Eppleston, J. and W. M. C. Maxwell. 1993. Recent attempts to improve fertility of frozen ram semen inseminated into the cervix. Wool Technol. Sheep Breed 41, 291–302.
6- Evans, G. and W. M. C. Maxwell. 1987. Salamon’s artiﬁcial insemination of sheep and goats. Butterworths. Sydney, Australia.
7- Fukui, Y. and E. Roberts. 1978. Further studies on non-surgical intrauterine technique for artiﬁcial insemination in the ewe. Theriogenology 10 ,381–393.
8- Habibizad, J., H. Karami-Shabankareh and M. Muhaghegh-Dolatabady. 2015. Influence of age and cervical grade on anatomy, morphology and depth of cervical penetration in Sanjabi ewes. J Livest Sci Technol 3(2), 33-38.
9- Halbert, G. W., H. Dobson, J.S. Walton and B. C. Buckrell. 1990. The structure of the cervical canal of ewe. Theriogenology 33, 977–992.
10- Halbert, G. W., H. Dobson, J.S. Walton and B. C. Buckrell. 1990. A technique for transcervical intrauterine insemination of ewes. Theriogenology 33, 993–1010.
11- Crus Júnior, C. A., C. McManus, J. L. Jivago, M. Bernardi and C. M. Lucci. 2014. Anatomical and histological characterization of the cervix in Santa Inês hair ewes. Anim Reprod 11(1), 49-55.
12- Kaabi, M., M. Alvarez, E. Anel, C.A. Chamorro, J. C. Boixo, P. De Paz and L. Anel. 2006. Influence of breed and age on morphometry and depth of inseminating catheter pene-tration in the ewe cervix: A postmortem study. Theriogenology 66, 1876-1883.
13- Kershaw, C. M., M. Khalid, M.R. McGowan, K. Ingram, S. Leethongdee, G. Wax and R.J. Scaramuzzi. 2005. The anatomy of sheep cervix and its influence on the transcervical passage of an inseminating pipette into the uterine lumen. Theriogenology 64, 1225-1235.
14- Khodaei Motlagh, M. 2014. Anatomy of the cervix in farahani breed ewes and lambs. Scientific J Anim Sci 3(7), 198-202.
15- Leethongdee, S. 2009. Development of trans-cervical artificial In-semination in sheep with special reference to anatomy of cervix. Suranaree J Sci Technol 17(1),57-69.
16- Marzban Abbasabadi, B., H. Kochakzadeh and A. Kaveh Aski. 2017. Evaluating Gross Anatomy of Cervix in Zel Sheep. Anat Sci J 14(3),115-120.
17- More, J. 1984. Anatomy and histology of the cervix uteri of the ewe: new insights. Acta Anat 120, 156–9.
18- Mustafa, O. D., B. Kamil, E. Emrullan and O. Sema. 2010. Anatomy of the Cervical Canal in the Angora Goat. Kafkas univ vet fak derg 16(5), 847-850.
19- Naqvi, S. M. K., A. Joshi, A. K. Mathur, S. Bag and J. P. Mittal. 1997. Intrauterine artiﬁcial insemination of Malpura ewes in natural estrus with frozen ram semen. Indian J Anim Sci 67, 982–983.
20- Naqvi, S. M. K., A. Joshi, S. Bag, S. R. Pareek and J. P. Mittal. 1998. Cervical penetration and transcervical AI of tropical sheep (Malpura) at natural oestrus using frozen thawed semen. Small Rumin Res 29, 329–333.
21- Naqvi, S. M. K., A. Joshi, G. K. Das and J. P. Mittal. 2001. Development and application of ovine reproductive technologies: an Indian experience. Small Rumin Res 39, 199–208.
22- Naqvi, S. M. k., G. K. Pandey, K. K. Gautam, A. Joshi, V. Geethalakshmi and J. P. Mittal. 2005. Evaluation of gross anatomical features of cervix of tropical sheep using cervical silicone moulds. Anim Reprod Sci 85(2005), 337–344.
23- Salamon, S. and W. M. C. Maxwell. 1995. Frozen storage of ram semen ІІ. Causes of low fertility after cervical insemination and methods of improvement. Anim Reprod Sci 38, 1–36.
24- Umscheid, C. A., W. X. Wu, P. Gordan and P. W. Nathanielsz. 1998. Up-regulation of oxytocin receptor messenger ribonucleic acid and protein by estradiol in the cervix of ovariectomized rat, Biol Reprod 59, 1131-8.
25- indsor, D. P., A. Z. Szell, C. Buschbeck, A. Y., Edward, J. T. B. Milton and B. C. Buckrell. 1994. Transcervical artiﬁcial insemination of Australian Merino ewes with frozen-thawed semen. Theriogenology 42, 147–157.