مطالعه عفونت تجربی ویروس بیماری نیوکاسل در جوجه‌های مادر بومی متعاقب آلودگی ویروس بیماری بورس عفونی

نوع مقاله: مقاله کامل

نویسندگان

بخش بهداشت و بیماری‌های طیور گروه علوم درمانگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران

چکیده

نشانه‌های بالینی، جراحات ماکروسکوپی، گسترش ویروس در بافت‌ها و انتشار در محیط و پاسخ‌ ایمنی هومورال به ویروس حاد نیوکاسل در جوجه‌های مادر بومی متعافب آلودگی به ویروس گامبورو مورد بررسی قرارگرفت. یک‌صد و بیست جوجه‌ی مادر بومی یک روزه به‌طور تصادفی به چهار گروه مساوی تقسیم شدند. جوجه‌های گروه اول و دوم در سن یک‌روزگی به ویروس بیماری بورس عفونی با دوزCID50 103 به داخل بورس تلقیح شدند. جوجه‌های گروه یک و سه در 30 روزگی با 1/0 میلی لیتر از مایع آلانتوئیک حاوی EID50105 ویروس نیوکاسل به روش چشمی- بینی تلقیح شدند و گروه چهارم به عنوان کنترل منفی نگه‌داری شدند. جوجه‌ها بعد از تلقیح، روزانه چهار بار ازنظر نشانه‌های درمانگاهی مشاهده شدند. در روزهای دو، ۵، 10، 15 و 18 پس از تلقیح ویروس نیوکاسل، سوآب از نای و کلواک چهار جوجه ازهر گروه‌ تهیه شد. همچنین چهار جوجه از هر گروه در روزهای دو، ۵، 10 و 15، کشتارشده و نمونه‌های بافتی از مغز، نای، ریه، کلیه و کبد برای ردیابی ویروس با روش RT-PCRبرداشته شدند. نتایج نشان داد نشانه‌های بالینی بیماری نیوکاسل درگروه‌های آلوده به ویروس گامبورو و نیوکاسل شدیدتر بود و این جوجه‌ها مدت طولانی‌تری ویروس نیوکاسل را از نای و کلواک دفع کردند وعیار پادتن ضدویروس نیوکاسل کمتری داشتند. آنالیز واریانس دوطرفه نشان داد آلودگی جوجه‌های مادر بومی به ویروس گامبورو بر پاسخ ایمنی هومورال پرنده تاًثیر داشته است (001/0>P). مطالعه نشان داد ویروس بیماری گامبورودرجوجه‌های مادر بومی می‌تواند منجربه حساسیت بیش‌ترآن‌ها به بیماری نیوکاسل و تشدید بیماری‌زایی و دفع ویروس شود.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Study on Experimental Infection of Newcastle Disease Virus in Local Breeder Chicks Infected with Infectious Bursal Disease Virus

نویسندگان [English]

  • M. Mayahi
  • Z. Boroomand
  • R. Jafari
  • H. Zahabi
Avian Health and Diseases, Faculty of Veterinary Medicine, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz-Iran.
چکیده [English]

Clinical signs, macroscopic lesions, virus tissue distribution, shedding and humoral immune responses to virulent Newcastle disease virus in native breeder chicks were studied .One hundred and twenty day-old native breeder chicks were divided randomly into four equal groups. Groups one and two were infected with 103 CID50 infectious bursal disease virus (IBDV) by intra-bursal route on day-old. Groups one and three chicks were infected with 105EID50 virulent ND virus by nasal route on 30th days. Fourth group 4 chicks were kept as uninfected control group. Clinical signs were observed daily after each inoculation. Tracheal and cloacal swabs from four live birds of each group collected on days of two, 5, 10, 15 and 18 post NDV infection and on the same days except days eighteen, four chicks were randomly euthanized and organ tissue samples from brain, trachea, lung, kidney and liver were collected to detect ND virus by RT-PCR method. Clinical signs was more severe in IBDV and ND virus infected group and ND virus was detected from trachea and cloaca swabs for a longer period and mean HI titer to ND virus in these birds was lower. Two-way analysis of variance showed IBD infection significantly affected immune humoral response (P<0.001). The study showed that infection of native breeder chicks with IBDV increased bird sensitivity, ND pathogenicity and virus shedding.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Infectious bursal disease
  • Newcastle disease
  • Native breeder chickens
  • Immunosuppression
1- Alexander, D.J., and Senne, D. A. (2008); Newcastle disease. In Diseases of Poultry. Saif, Y.M., Fadly,A.M., Glisson, J.K., Mcdouglad, L.R., Nolan, L.K., and Swayne, D.E. 12th Edition. Blackwell Publishing Professional. Ames, Iowa, U.S.A: 75-100.
2- Boroomand, Z., Jafari, R. A., Mayahi, M. (2016); Molecular characterization and phylogenetic study of the fusion genes of Newcastle disease virus from the recent outbreaks in Ahvaz, Iran. VirusDis., 27(1):102–105
3- Bwala, D.G. (2009). Challenge studies in chickens to evaluate the efficacy of commercial Newcastle disease vaccines against the strains of Newcastle disease virus prevalent in South Africa since 2002. Thesis of Master of Science. Department of Production Animal Studies Faculty of Veterinary Science University of Pretoria.
4- Daniela S. Gohm1, Barbara Th¨ur* & M. A. Hofmann. (2000). Detection of Newcastle disease virus in organs and faeces of experimentally infected chickens using RT-PCR. Avian Pathology, 29, 143– 152.
5- Eterradossi, N. and Saif, YM. (2013). Infectious Bursal Disease. In: Swayne, DE.; Glisson, JR.; McDougald, LR.; Nolan, LK.; Suarez, DL. And Nair, V. (Eds). Diseases of Poultry. 13th ed. John Wiley & Sons, Inc: Ames, USA, PP: 219-246.
6- Genova, K. (2000). Influence of the infectious bursal disease virus strains on the avian immune system. Experimental Pathology and Parasitology, 4: 27-30.
7- Kinde H, Uzal F, Hitala S et al (2003) The diagnosis of exotic Newcastle Disease in southern California; 2002-2003. Proceeding of the 46th Annual Conference of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians San Diego, CA, October 11-13, 2003.
8- Mayahi, M. (1999). Effects of Cyclophosphamid in IBD, immune response and lymphoid organs in broiler chickens. Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Shahaid Chamran University of Ahvaz.
9- Mohammadian Ghale Jooghi B. (2015), Isolation and molecular identification of Newcastle disease virus from suspected broiler farms in Khouzestan province and evaluation of the protection of B1 Newcastle disease vaccine against the most prevalent isolate. Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Shahaid Chamran University of Ahvaz.
10- Motamed, N.; Mayahi, M.; Seifi, MR. (2012). Experimental infection whit avian influenza virus subtype H9N2 in broiler chicks with infectious bursal disease virus. Online Journal of Veterinary Research, 16(13): 232-239.
11- Ogawa, M.; Wakuda, T.; Yamaguchi, T.; Murata, K.; Setiyono, A.; Fukushi, H. and Hirai, K. (1998). Seroprevalence of infectious bursal disease virus in free-living wild birds in Japan. Journal Of Veterinary Medical Science, 60 (11): 1277-1279.
12- OIE (office international des epizooties), 2009. Newcastle disease In Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, 2009. Chapter 2.3.14: 576-589.
13- Roussan, D. A., Haddad, R., Khawaldeh, G., and Shaheen, I. (2007). Newcastle disease virus infection related to subclinical Infectious bursal disease. The Journal of Poultry Science. 44: 446-452.
14- Subler,K. A., Mickael, C. S., and Jackwood, D. J. (2006). Infectious bursal disease virus-induced immunosuppression exacerbates Campylobacter jejuni. Avian Diseases, 50: 179-84.
15- Thangavelu, G. A., and Venugopalan, A. T. (1998). Pathogenicity Immunsuppressive Properties of Infectious Bursal Disease Virus Field Isolats and Commrcial Vaccins in India. Tropical Animal Health and Production, 30: 167-176.
16- Thayer, S.G. and Beard, C.W. (2008). Serologic Procedure. In: A Laboratory Manual for the Isolation, Identification and Caractrization of Avian Pathogens. Edit by Dufor-Zavala, L.; Swayne, D.E.; Glison, J.R.; Pearson, J.E.; Reed, M.W. and Woolcock, P.R. 5th Edition, published by AAAP, Inc. Athens, Georgia, pp: 222-229.
17- Villegas P (2008). Titration of biological suspensions. In: A Laboratory Manual for the Isolation, Identification and Characterization of Avian Pathogens. Dofour-Zavala L, Swayne DE, Glisson JR, Pearson JE, Reed WM, Jackwood MW and Woolcock Pr (eds), 5th edition. American Assosiation of Avian Pathologists, Athens, GA, PP: 217-221.
18- Westbury, H. A.(2008). Interaction between Infectious Bursal Disease virus and Newcastle Disease virus in chicken. Australian Veterinary Journal, 54: 349-351.